Thanh bên bài viết

PDF
Ngày xuất bản: 30/06/2025
Số lượt xem tóm tắt: 216
Số lượt xem PDF: 21
DOI: 10.54607/hcmue.js.22.6.4648(2025)
Số xuất bản
Tập 22 Số 6 (2025)
Chuyên mục
Bài viết
Trích dẫn bài báo
Nguyễn, Đ. H., Trương, Q. H., & Nguyễn, Q. T. (2025). HOẠT TÍNH ỨC CHẾ XANTHINE OXIDASE VÀ KHÁNG UNG THƯ CỦA CAO CHIẾT DÂY MỎ QUẠ (Dischidia major (Vahl) Merr.) PHÚ QUỐC. Tạp chí Khoa học Trường Đại học Sư phạm TP Hồ Chí Minh, 22(6), 1047-1055. https://doi.org/10.54607/hcmue.js.22.6.4648(2025)

HOẠT TÍNH ỨC CHẾ XANTHINE OXIDASE VÀ KHÁNG UNG THƯ CỦA CAO CHIẾT DÂY MỎ QUẠ (Dischidia major (Vahl) Merr.) PHÚ QUỐC

Nguyễn Đức Hiển1, Trương Quốc Hưng, Nguyễn Quốc Trung1,
1 Trường Đại học Khoa học tự nhiên, ĐHQG-HCM

Nội dung chính của bài viết

Tóm tắt

Dây mỏ quạ (Dischidia major (Vahl) Merr.) là loài thực vật bản địa với tiềm năng y học nhưng chưa được nghiên cứu toàn diện tại Việt Nam. Nghiên cứu này được thực hiện nhằm đánh giá hoạt tính ức chế xanthine oxidase, khả năng tương thích sinh học trên tế bào HEK293 và kháng ung thư, trên hai dòng tế bào HepG2 và MCF7 của cao chiết methanol từ dây mỏ quạ. Cao chiết được phân tích định lượng các nhóm chất polyphenol, flavonoid, saponin và alkaloid. Kết quả cho thấy cao chiết dây mỏ quạ có hàm lượng polyphenol, flavonoid, alkaloid và saponin lần lượt là 191,18 ± 6,57 đương lượng acid gallic trên g cao chiết (mg GAE/g cao chiết); 32,09 ± 1,11 đương lượng quercetin trên g cao chiết (mg QE/g cao chiết); 189,79 ± 8,13 đương lượng atropine trên g cao chiết (mg AE/g cao chiết) và 215,33 ± 4,41 đương lượng acid oleanolic trên g cao chiết (mg OAE/g cao chiết). Cao chiết thể hiện khả năng ức chế xanthine oxidase với IC50 = 46,4 µg/mL, tương thích sinh học trên tế bào HEK293 đồng thời ức chế các dòng tế bào ung thư HepG2 và MCF7 với IC50 lần lượt là 84,50 µg/mL và 73,74 µg/mL. Nghiên cứu này cho thấy tiềm năng ứng dụng của cao chiết dây mỏ quạ trong phát triển dược liệu hỗ trợ điều trị bệnh gút và ung thư.

Từ khóa

alkaloid, dây mỏ quạ, flavonoid, polyphenol, saponin, ung thư, xanthine oxidase

Chi tiết bài viết

Thông tin về tác giả

Nguyễn Quốc Trung, Trường Đại học Khoa học tự nhiên, ĐHQG-HCM

 

Tài liệu tham khảo

Badve, S. V., Brown, F., Hawley, C. M., Johnson, D. W., Kanellis, J., Rangan, G. K., & Perkovic, V. (2011). Challenges of conducting a trial of uric-acid-lowering therapy in CKD. Nature Reviews Nephrology, 7(5), 295-300. https://doi.org/10.1038/nrneph.2010.186
Bag, G. C., Devi, P. G., & Bhaigyabati, T. H. (2015). Assessment of total flavonoid content and antioxidant activity of methanolic rhizome extract of three Hedychium species of Manipur valley. International Journal of Pharmaceutical Sciences Review and Research, 30(1), 154-159.
Balkwill, F., & Mantovani, A. (2001). Inflammation and cancer: back to Virchow? The Lancet, 357(9255), 539-545. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(00)04046-0
Brglez, M. E., Knez, H. M., Škerget, M., Knez, Ž., & Bren, U. (2016). Polyphenols: Extraction methods, antioxidative action, bioavailability and anticarcinogenic effects. Molecules, 21(7), Article 901. https://doi.org/10.3390/molecules21070901
Dalbeth, N., Choi, H. K., Joosten, L. A. B., Khanna, P. P., Matsuo, H., Perez-Ruiz, F., & Stamp, L. K. (2019). Gout. Nature Reviews: Disease Primers, 5(1), Article 69. https://doi.org/10.1038/s41572-019-0115-y
Duda-Chodak, A., & Tarko, T. (2023). Possible side effects of polyphenols and their interactions with medicines. Molecules, 28(6), Article 2536. https://doi.org/10.3390/molecules28062536
Hoang, V. P., Phan, D. U. T., Duong, V. Q. P., Tran, T. V. A., Nguyen, T. K., & Phan, V. H. N. (2022). Crucial Role of Surfactants in Improving the Extraction Efficiency of β-Amyrin from Dischidia major Using Ultrasound-Assisted Extraction Coupled with Gas Bubble Flotation. Langmuir, 38(30), 9285-9293. https://doi.org/10.1021/acs.langmuir.2c01042
Kostić, D. A., Dimitrijević, D. S., Stojanović, G. S., Palić, I. R., Đorđević, A. S., & Ickovski, J. D. (2015). Xanthine oxidase: isolation, assays of activity, and inhibition. Journal of Chemistry, 2015(1), Article 294858. https://doi.org/10.1155/2015/294858
Le, A. V., Parks, S. E., Nguyen, M. H., & Roach, P. D. (2018). Improving the vanillin-sulphuric acid method for quantifying total saponins. Technologies, 6(3), Article 84. https://doi.org/10.3390/technologies6030084
Liao, Y., Li, Z., Zhou, Q., Sheng, M., Qu, Q., Shi, Y., Yang, J., Lv, L., Dai, X., & Shi, X. (2021). Saponin surfactants used in drug delivery systems: A new application for natural medicine components. International Journal of Pharmaceutics, 603, Article 120709. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2021.120709
Lin, K.-W., Huang, A.-M., Tu, H.-Y., Lee, L.-Y., Wu, C.-C., Hour, T.-C., Yang, S.-C., Pu, Y.-S., & Lin, C.-N. (2011). Xanthine oxidase inhibitory triterpenoid and phloroglucinol from guttiferaceous plants inhibit growth and induced apoptosis in human NTUB1 cells through a ROS-dependent mechanism. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 59(1), 407-414. https://doi.org/10.1021/jf1041382
Mondal, A., Gandhi, A., Fimognari, C., Atanasov, A. G., & Bishayee, A. (2019). Alkaloids for cancer prevention and therapy: Current progress and future perspectives. European Journal of Pharmacology, 858, Article 172472. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2019.172472
Nugraha, A. S., Triatmoko, B., Wangchuk, P., & Keller, P. A. (2020). Vascular epiphytic medicinal plants as sources of therapeutic agents: Their ethnopharmacological uses, chemical composition, and biological activities. Biomolecules, 10(2), Article 181. https://doi.org/10.3390/biom10020181
Roddy, E., & Doherty, M. (2010). Gout. Epidemiology of gout. Arthritis Research & Therapy, 12, 1-11. https://doi.org/10.1186/ar3199
Saikia, G., & Devi, N. (2024). Ethnomedicinal understandings and pharmacognosy of Dischidia (Apocynaceae: Asclepiadoideae): A potential epiphytic genus. Phytomedicine Plus, 4, Article 100707. https://doi.org/10.1016/j.phyplu.2024.100707
Scudiero, D. A., Shoemaker, R. H., Paull, K. D., Monks, A., Tierney, S., Nofziger, T. H., Currens, M. J., Seniff, D., & Boyd, M. R. (1988). Evaluation of a soluble tetrazolium/formazan assay for cell growth and drug sensitivity in culture using human and other tumor cell lines. Cancer Research, 48(17), 4827-4833.
Shamsa, F., Monsef, H., Ghamooshi, R., & Verdian-Rizi, M. (2008). Spectrophotometric determination of total alkaloids in some Iranian medicinal plants. The Thai Journal of Pharmaceutical Sciences, 32(1), 17-20. https://doi.org/10.56808/3027-7922.2196
Singleton, V. L., Orthofer, R., & Lamuela-Raventós, R. M. (1999). Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of folin-ciocalteu reagent. In Methods in enzymology (Vol. 299, pp. 152-178). Elsevier. https://doi.org/10.1016/S0076-6879(99)99017-1
Sun, Z.-G., Wu, K.-X., Ullah, I., & Zhu, H.-L. (2024). Recent Advances in Xanthine Oxidase Inhibitors. Mini Reviews in Medicinal Chemistry, 24(12), 1177-1186. https://doi.org/10.2174/1389557523666230913091558
Talib, W. H., & Mahasneh, A. M. (2010). Antimicrobial, cytotoxicity and phytochemical screening of Jordanian plants used in traditional medicine. Molecules, 15(3), 1811-1824. https://doi.org/10.3390/molecules15031811
Tran, N. H., Dang, T. H., & Bui, T. D. (2020). Đặc điểm phân bố thực vật cho lâm sản ngoài gỗ ở Vườn Quốc gia Phú Quốc, tỉnh Kiên Giang [Distribution characteristics of plants fornon-timber forest products in Phu Quoc national park, Kien Giang province]. Journal of Forestry Science and Technology, 3, 81-89.
Wang, X., Ma, Y., Xu, Q., Shikov, A. N., Pozharitskaya, O. N., Flisyuk, E. V, Liu, M., Li, H., Vargas-Murga, L., & Duez, P. (2023). Flavonoids and saponins: What have we got or missed? Phytomedicine, 109, Article 154580. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2022.154580
Xue, H., Xu, M., Gong, D., & Zhang, G. (2023). Mechanism of flavonoids inhibiting xanthine oxidase and alleviating hyperuricemia from structure–activity relationship and animal experiments: A review. Food Frontiers, 4(4), 1643-1665. https://doi.org/10.1002/fft2.287